Tiểu luận Ứng dụng kĩ thuật Real-Time PCR sử dụng displacing probe để chẩn đoán hiện tượng virus HBV kháng thuốc lamuvidine ở bệnh nhân mắc bệnh viêm gan siêu vi B

g hợp không có triệu chứng lâm sàng ở những trường hợp viêm gan vi rút B 
mãn tính mà chỉ có xét nghiệm máu chúng ta mới chẩn đoán được bệnh. Do đó, vai trò của xét 
nghiệm trong chẩn đoán viêm gan do vi rút B giữ một vai trò cực kỳ quan trọng. Có nhiều loại 
xét nghiệm khác nhau được sử dụng trong chẩn đoán viêm gan virus HBV, mỗi loại có một ý 
nghĩa khác nhau tùy vào từng giai đoạn của bệnh mà người bác sĩ sẽ lựa chọn xét nghiệm 
thích hợp. 
 Có 5 xét nghiệm hay được dùng trong chẩn đoán, đánh giá vi rút viêm gan siêu vi B 
trước đây là HBsAg, AntiHBs, HBeAg, AntiHBe, AntiHBc IgM và AntiHBc IgG. Các xét 
nghiệm này là những xét nghiệm cơ bản, dùng phương pháp miễn dịch để phát hiện nhưng 
vẫn có một số hạn chế. 
 Vào những năm cuối thế kỷ 20, kỹ thuật sinh học phân tử ra đời và có tốc độ phát 
triển nhanh chóng, đặc biệt là kĩ thuật PCR mà điển hình là Real-time PCR đã mở ra một kỷ 
nguyên mới về chẩn đoán gen nên chúng ta đã có thể chẩn đoán được vi rút viêm gan B ở mức 
độ phân tử (Đó là các xét nghiệm phân tích trên phân tử di truyền của HBV là DNA). Nhờ ứng 
dụng các kỹ thuật về phân tích DNA của HBV mà chúng ta có thể giải quyết được các hạn chế 
của các kỹ thuật miễn dịch kinh điển cũng như phân tích DNA vi rút giúp chúng ta có những cơ 
sở đánh giá tình trạng bệnh, khả năng diễn tiến của bệnh, theo dõi điều trị bệnh và lựa chọn 
phương thuốc điều trị thích hợp. 
I. TỔNG QUAN VỀ ĐỀ TÀI: 
 I..1 Tồng quan về virus HBV: 
HBV thuộc loại siêu vi trùng (hay virus): Nhóm VII (dsDNA-RT) Họ (familia): 
Hepadnaviridae. Chi (genus): Orthohepadnavirus. Loài (species): viêm gan B.  Có khả năng tồn 
tại cao. HBV bền vững với nhiệt độ :100 độ C virut sống được 30', ở -20 độ C sống tới 20 
năm, HBV kháng ete (eter), nhưng bất hoạt trong formalin(fócmon). 
 Cấu tạo của virus HBV cũng giống đại đa số các virus khác. Chúng có lớp vỏ ngoài 
bằng protein, có chứa trên bề mặt nhiều kháng nguyên HBs, và cấu trúc DNA bên trong. HBV 
là chủng virus duy nhất có cấu trúc DNA có khả năng lây truyền qua đường máu. 
H1.1 Cấu trúc của virus HBv. Chuỗi DNA, Protein nhân HBc, Protein bề mặt HBs (phải) 
 Cấu trúc DNA của virus HBV là một chuỗi DNA có phần gập đôi khoảng 3,2 kbp. 
Chứa các gene cần thiết cho quá trình xâm nhập, sinh sản cũng như gây bệnh. DNA của BBV 
có khả năng bị đột biến cao khi lạm dụng thuốc điều trị, gây nên chứng kháng thuốc ở người 
bệnh mãn tính. 
 H1.2 Cấu trúc bộ gene của virus HBV 
 Cơ chế xâm nhập và nhân bản: virus HBV sẽ bám trên tế bào chủ thông qua một 
thụ thể trên màng tế bào. Sau đó bơm DNA vào trong tế bào chất. Tiếp đó, DNA cua virus sẽ di 
chuyển vào nhân của tế bào chủ, sau đó nhân lên. Tiếp tục quá trình là sự phiên mã ra mRNA. 
mRNA sẽ đi ra ngoài tế bào chất, tiến hành tổng hợp các protein cần thiết cho sự tạo thành virus 
mới. Sau đó viruse sẽ thoát ra ngoài tế bào và tiếp tục chu trình mới. 
H1.3 Cơ chế xâm nhập và nhân bản của HBV 
I.2 Tổng quan về kĩ thuật Real Time PCR: 
 I.2.1 Định nghĩa: 
 Real Time PCR (RT PCR) là một kĩ thuật dùng để định lượng sự tích lũy 
DNA ngay khi phản ứng khuếch đại đang xảy ra. 
 I.2.2 Nguyên lí hoạt động: 
 RT PCR có khả năng định lượng là nhờ sử dụng một loại phân tử phát huỳnh 
quang có tên gọi là Probe. Probe là một đoạn DNA có gắn phân tử phát huỳnh quang. Máy luân 
nhiệt có trang bị một bộ phận đặc biệt có khả năng nhận biết và đo lường các tín hiệu huỳnh 
quang. Tín hiệu huỳnh quang được đo lường và được phân tích, từ đó phản ánh được lượng 
DNA trong mỗi chu kỳ. 
H1.4 Máy Real Time PCR 
I.3 Thuốc điều trị Lamivudine:( tên biệt dược Zeffix ) 
 Lamuvidine là thuốc điều trị HBV đặc hiệu. Nó có công thức cấu tạo C8H11N3O3S 
( 4-amino-1-[(2R,5S)-2-(hydroxymethyl)-1,3-oxathiolan-5-yl]-1,2-dihydropyrimidin-2-one). 
H1.5 Công thức cấu tạo của Lamivudine. H1.6 Công thức cấu tạo 3D của Lamivudine. 
 Lamivudine thuộc nhóm thuốc Nucleosides analogues tức là nhóm có cấu trúc tương 
tự tương tự Purine hay pyrimidine, nó làm ngăn chặn quá trình tổng hợp DNA của virus bằng 
cách gắn kết vào DNA polymerase của Virus. Thuốc rất an toàn , dễ dung nạp và ít hại cho tế 
bào. Tuy nhiên khả năng làm mất cccDNA thì không bền vững , vì vậy phải duy trì thuốc trong 
thời gian dài. 
 Cơ chế tác động: Cơ chế tác động chủ yếu của Lamivudine bao gồm sự ức chế tổng 
hợp DNA virus. Tác động này xảy ra chủ yếu qua sự kết hợp vào HBV DNA vừa mới tổng hợp, 
gây kết thúc chuỗi tiến trình tổng hợp. Sự ức chế tương tranh trên DNA polymerase mã hóa 
DHBV cũng đã được chứng minh. Lamivudine là một chất ức chế cạnh tranh yếu trên DNA 
polymerase của tế bào người bệnh và không làm kết thúc chuỗi tổng hợp DNA của tế bào người 
bệnh. Lamivudine không ức chế trực tiếp sự tổng hợp protein của virus, tuy nhiên việc giảm 
tổng hợp protein virus là hậu quả của sự ức chế tổng hợp DNA virus. Nhất quán với cơ chế này, 
việc giảm HBeAg và HBsAg trong huyết thanh ở bệnh nhân xảy ra chậm hơn nhiều so với giảm 
virus trong máu.( HbeAg: kháng nguyên nội sinh nếu có trong máu bệnh nhân đang có khả năng 
lây rất cao. HbsAg: kháng nguyên bề mặt thuộc lớp vỏ của HBV - dùng trong xét nghiệm máu 
để biết có HBV trong cơ thể). 
 Zeffix cần có sự phosphoryl hóa nội bào để thể hiện tác động kháng virus. Vì vậy, 
khả năng kháng virus của nó liên hệ chặt chẽ với hàm lượng Zeffix triphosphate sản sinh trong 
tế bào nhiễm HBV. Khi ở trong các lympho bào máu ngoại vi, Zeffix được phosphoryl hóa 
thành dẫn xuất 5'-triphosphate ở các tế bào. 
I.4 Nguyên nhân hiện tượng kháng thuốc Lamivudine: 
 Việc lạm dụng thuốc điều trị, cũng như việc sử dụng thuốc lâu dài ở các bệnh nhân 
viêm gan mãn tính gây ra hiện tượng kháng thuốc ở virus HBV. Đây là một hiện tượng nguy 
hiểm, làm giảm tác dụng của thuốc, đồng thời kéo dài thời gian điều trị có thể gây nhiều biến 
chứng nguy hiểm. 
 Sự kháng thuốc chủ yếu là do đột biến điềm gây nên. Đó là sự thay thế một acid 
amin nào đó ở vị trí codon trên chuỗi DNA. Người ta đã xác định được các đột biến điểm sau: 
¾ Từ leucin thành methionin ở codon 180 (rtL 180M). 
¾ Từ methionin thành valine hoặc isoleucine ở codon 204 (rtM 204V, rtM 204I) 
 Từ những đột biến điểm này người ta phân ra làm ba nhóm virus kháng thuốc: 
¾ rtM 204V kết hợp với rtL 180M. 
¾ rtL 204I. 
¾ rtM 204I và rtL 180M. 
H1.7 Các đột biến điểm xảy ra gây nên hiện tượng kháng thuốc Lamivudine. 
H1.8 Tổng hợp các dạng đột biến trên virus HBV 
 H1.9 Biểu đồ thể hiện sự kháng thuốc ở một bệnh nhân sử dụng Lamivudine và ETV 
II. Nguyên lý và phương pháp: 
II.1 Nguyên lý chung: 
 Sử dụng các probe có trình tự kết dính đặc hiệu với các đoạn chứa các đột biến 
kể trên. Khi vào chu trình nhiệt, các đoạn này sẽ được nhân lên, các displacing probe sẽ gắn kết 
đặc hiệu vào đoạn DNA cần phân tích, tín hiệu huỳnh quang sẽ được phát ra và được ghi nhận 
lại bằng máy huỳnh quang. Từ đó xác định được có hay không có sự kháng thuốc trong mẫu 
được phân tích. 
 II.2 Phương pháp thực hiện: 
 II.2.1 Probe: 
 Probe được sử dụng ở đây là Displacing probe. Là một mạch đôi 
oligonucleotic có trình tự đặc hiệu. Một mạch mang chất phát huỳnh quang ở đầu 5’, một mạch 
mang chất nhận ở đầu 3’. Thông thường mạch mang chất phát huỳnh quang sẽ dài hơn so với 
mạch mang chất nhận. Khi ở trạng thái bắt cặp với nhau, chất hấp thu sẽ liên kết với chất nhận, 
khi đó tín hiệu huỳnh quang bị hấp thu bởi chất phát huỳnh quanhấp thu, nên ta không nhận 
được tín hiệu huỳnh quang. 
 Trong bước bắt cặp, mạch ngắn của probe sẽ được tách ra, mạch dài sẽ được 
gắn vào trình tự đích trên chuỗi DNA mẫu. Và tín hiệu huỳnh quang được phát ra. Lượng tín 
hiệu huỳnh quang nhận được sẽ tỉ lệ thuận với số lượng trình tự đíc có trong mẫu. 
H Displacing Probe. 
 Displacing Probe sử dụng trong trường hợp này được đánh dấu bằng những 
chất nhận huỳnh quang khác nhau tương ứng cho mỗi đột biến cần nhận diện. Ở đây sử dụng 
các chất đánh dấu huỳnh quang sau đây: 
• WT(wild type) được đánh dấu bằng 6-carboxyfluorescein (FAM). 
• M204V, M204I(dạng đột biến) được đánh dấu bằng 6-carboxy-2∗,4,4∗,5∗,7,7∗-
hexachlorofluorescein (HEX). 
• L180M(dạng đột biến) được đánh dấu bằng carboxy-X-rhodamine (ROX). 
 Probe này được sử dụng đồng thời với 2 primer khác. 2 primer này đảm trách 
nhiệm vụ kéo dài đoạn DNA cho tới khi các probe bắt cặp vào chuỗi mục tiêu. 
 Cấu trúc cũng như trình tự của các loại displacing probe được thể hiện ở hình 
dưới đây. 
The sequences of the primer, probes, and oligonucleotides used for YMDD analysis 
Primers, probes, and oligonucleotides Sequencea 
Primers used for real-time PCR analysis 
PF 5∗-CCTGTATTCCCATCCCATCATCT-3∗ 
PR 5∗-TTGGTAACAGCGGCATAAAGGGACTC-3∗ 
Primers used for DNA sequencing 
PSFW 5∗-TTCTTGTTGGTTCTTCTGGAC-3∗ 
PSRV 5∗-TTGGTAACAGCGGCATAAAGGGACTC-3∗ 
Probes 
 WT 
M204V 
M204I 
 L180M 
 Oligonucleotides 
WT 5∗-GGCTTTCAGTTATATGGATGATGTGGTTTTGG-3∗ 
M204V 5∗-GGCTTTCAGTTATGTGGATGATGTGGTTTTGG-3∗ 
 M204I 5∗-GGCTTTCAGTTATATTGATGATGTGGTTTTGG-3∗ 
L180M 5∗ -TAAACTGAGCCATGAGAAACGGACT-3∗ 
180T 5∗ -TAAACTGAGCCAAGAGAAACGGACT-3∗ 
180C 5∗ -TAAACTGAGCCAGGAGAAACGGACT-3∗ 
a Blocked bases 
denote mutation sites. 
 II.2.2 Quá trình thực hiện: 
 II.2.2.1 Ly trích DNA từ mẫu: 
 Mẫu huyết thanh sau khi được thu về, người ta lấy 50µl đem đi ly 
trích và định lượng DNA của virus bằng HBV PCR-Fluorescence Test Kit (Talent Biotech, 
Xiamen, China). Sau đó người ta sẽ thu hồi lượng DNA đã ly trích và cho vào 50µl elution 
buffer. 
 II.2.2.2 Khuếch đại mẫu: 
 Là một bước vô cùng quan trọng quyết định sự chính xác của việc 
chẩn đoán. Sở dĩ có bước này để khắc phục hạn chế về ngưỡng phát hiện của kĩ thuật chẩn 
đoán. Nếu lượng DNA trong mẫu thấp dưới ngưỡng phát hiện thì sẽ cho ra kết quả âm tính giả. 
Vì vậy việc khuếch đại mẫu sẽ giúp việc phát hiện được chính xác và dễ dàng hơn. 
 Qui trình thực hiện: 
 Lấy 25µl dung dịch buffer đã chứa mẫu (khoảng 5µl DNA mẫu) 
trộn với 0,04 µM forward primer (Pf,bảng trên), 0,4µM reverse primer (PR, bảng trên), Và 
4,0mM MgCl2 trong một PCR master mix bao gồm 10mM Tris-HCl pH 8,6, 50mM KCl, 3,0 U 
Taq DNA polymerase, 600µM dNTPs. 
 Chu trình nhiệt sử dụng là: 
¾ Khởi động chu trình bằng cách nâng nhiệt độ lên 95oC trong 3 phút. 
¾ 10 chu trình trước khi khuếch đại dùng 94oC trong 10s, 55oC trong 20s, 72oC 20s 
¾ 30 chu trình tương tự như trên. 
 II.2.2.3 Sử dụng Real-time PCR để xác định hiện tượng kháng thuốc: 
 Sau bước khuếch đại mẫu ta tiếp tục quá trình chạy Real-time 
PCR để xác định mầm bệnh. Từ mẫu đã khuếch đại thêm vào 0,5µM mỗi loại probe (WT, 
M204V, M204I, L180M), 0,1 µM forward primer, 0,1µM reverse primer, 800µM dNTPs và 
làm tương tự như bước khuếch đại mẫu. Sau khi chạy tiếp 40 chu trình giống như trên. 
 Tiếp theo tới quá trình nhận tín hiệu huỳnh quang, qua 4 bước: 
¾ Ba bước đầu được thực hiện : 94oC 10s => 55oC 20s => 72oC 20s 
¾ Bước thứ 4 bắt đầu từ 39oC giảm xuống 34o với tốc độ giảm nhiệt là 0,3oC/s, và ngừng 
ở 340C trong 18s. Lúc này ta tiến hành đo huỳnh quang phát ra. 
 Sở dĩ phải đưa về 34oC vì huỳnh quang đo được tốt nhất ở 34oC ( 
đối với những chất làm tín hiệu huỳnh quang trong truong hợp này). Từ đó ta thu được biểu đồ 
phát huỳnh quang của 4 loại probe kể trên. Từ đó có thể xác định được mẫu đó có chứa virus 
HBV kháng lại Lamivudine hay không. 
 Sơ đồ tổng quan các bước của chu trình Real-time PCR này: 
Mẫu 
50µl Mẫu 
Ly trích trong HBV PCR-
Fluorescence Test Kit 
Thu hồi bằng 50µl elution 
buffer 
Lấy ra 25µl 
Chạy PCR để khuếch đại mẫu trong 
30 chu trình 
Chạy RT PCR trong 40 chu trình. Thu kết quả 
Xử lý kết quả 
Thêm vào: 
¾ 0,04 µM forward primer, 
¾ 0,4µM reverse primer, 
¾ 4,0mM MgCl2, 
¾ 10mM Tris-HCl pH 8,6, 
¾ 50mM KCl, 
¾ 3,0 U Taq DNA polymerase, 
¾ 600µM dNTPs 
¾ 0,5µM mỗi loại probe 
(WT, M204V, M204I, 
L180M) 
¾ 0,1 µM forward primer 
¾ 0,1µM reverse primer 
¾ 800µM dNTPs 
 II.2.3 Kết quả: 
 Sau khi chạy PCR và thu nhận tín hiệu huỳnh quang và xử lý tín hiệu thu 
được ta có thể nhận được các kết quả như sau: 
H . Real-time PCR results obtained from five representative HBV sequences. (A) Wild-type; (B) rtM204V/rtM204I; (C) 
wild-type and rtM204V/rtM204I mixture; (D) rtM204V/rtM204I and rtL180M mixture; (E) wild-type, rtM204V/rtM204I, and 
rtL180M mixture. The fluorescence of each probe is indicated as follows: FAM (closed circles), HEX (open circles), ROX 
(closed triangles). 
 Ở hình A là kết quả thu được chỉ với loại WT không có đột biến. Tiếp 
theo, ở hình B chỉ có đột biến ở condon 204, tương tự ở hình C có chủng đột biến ở condon 204 
và chủng không đột biến, hình D chứa cả 2 loại đột biến. Hình E có cả WT và 2 loại đột biến. 
III. Ứng dụng thực tế và ưu nhược điểm của phương pháp: 
III.1 Ứng dụng thực tiễn: 
 Hiện nay phương pháp Real-Time PCR đã và đang được áp dụng rộng rãi 
trong việc chẩn đoán nhiều bệnh liên quan tới virus nói chung và bệnh viêm gan B nói riêng. 
Đặc biệt là các bệnh viện tuyến đầu ở nước ta đều đã trang bị và thực hiện rất nhiều xét nghiệm 
cho bệnh nhân mắc phải Virus HBV. 
 Việc sử dụng Realtime PCR có thể phát hiện những đột biến nguy hiểm(đặc 
biệt là đột biến điểm) có thể gây ra những hậu quả nghiêm trọng cho người bệnh. Từ đó bác sĩ 
có thể đưa ra những liệu pháp trị liệu để có thể cứu được người bệnh. 
 Ngoài việc sử dụng cho HBV ra, Real time PCR còn có thể sử dụng cho rất 
nhiều loại virus hay vi khuẩn gây bệnh khác như virus gây viêm gan C, D, vi khuan lao... Bên 
cạnh khả năng xác định đột biến điểm RT PCR còn có khả năng định lượng giúp cho bác sĩ có 
cái nhìn tổng quan về tình trạng bệnh của bệnh nhân, từ đó đưa ra phương pháp trị liệu thích 
hợp. 
 III.2 Ưu nhược điểm của phương pháp: 
 III.2.1 Ưu điểm: 
¾ Có thể xác định chính xác các đột biến điểm xảy ra. 
¾ Có thể giúp xác định tình trạng bệnh bằng khả năng định lượng. 
¾ Dễ thực hiện, giá thành khá rẻ (khoảng 300.000-400.000/ lần chạy). 
¾ Độ nhạy cao. 
¾ Độ chính xác cao. 
¾ Thích hợp cho cả việc sử dụng cho chẩn đoán ban đầu trước khi áp 
dụng các phương pháp chẩn đoán khác. 
¾ Có thể áp dụng rộng rãi cho nhiều chủng virus, vi khuẩn, nấm.... 
¾ Và đặc biệt có khả năng multidetection, phát hiện nhiều đột biến xảy 
ra trong cùng một lần chạy. 
 III.2.2 Nhược điểm: 
¾ Nếu mẫu có nồng độ quá thấp, khi sử dụng phương pháp này sẽ cho 
kết quả sai lệch, do vậy cần phải qua một bước trung gian là khuếch 
đại mẫu. 
¾ Phương pháp này vẫn còn gặp phải vấn đề các probe bắt cặp không 
đặc hiệu, gây sai lệch trong một số xét nghiệm. Tuy nhiên tỉ lệ này rất 
thấp (dưới 0,8%). 
¾ Khó khăn trong việc thiết kế các probe đặc hiệu để hạn chế sự bắt cặp 
sai nói trên. 
IV. Tổng kết lại: 
 Hiện tượng kháng thuốc cua virus HBV là do các đột biến điểm tại các codon 
180 và 204. Loại đột biến ở đây là đột biến thay thế. 
 Kĩ thuật phát hiện được ứng dụng ở đây là Real-time PCR sử dụng Displacing 
Probe. Và nó đã chứng tỏ được hiệu quả của mình. Đây là một trong những phương pháp phát 
hiện đang được áp dụng rộng rãi trên thế giới cũng như ở Việt Nam. 
 Sự ra đời của phương pháp này đã giúp hàng triệu người đang mắc phải căn bệnh 
này có thể tìm ra được những phương pháp điều trị tối ưu hơn. Và góp phần đẩy lùi căn bệnh 
này. Ngoài ra, RT PCR còn được áp dụng rộng rãi cho nhiều lĩnh vực, nhiều đối tượng khác. 
 Chính vì vậy, việc áp dụng nó là điều vô cùng cần thiết, nhất là trong việc chẩn 
đoán các bệnh liên quan tới virus, vi khuẩn, nấm... Tuy nhiên, dù kĩ thuật có tiên tiến tới đâu 
cũng không tránh khỏi những khó khăn và trở ngại cần phải giải quyết. Vì thế, cần phải có 
những nghiên cứu kĩ lưỡng hơn để giải quyết những bất cập này. 
TÀI LIỆU THAM KHẢO: 
1.Aberle SW, Kletzmayr J, Watschinger B, Schmied B, Vetter N, Puchhammer- Stockl E. 
Comparison of sequence analysis and the INNO-LiPA HBV DR line probe assay for detection 
of lamivudine-resistant hepatitis B virus strains in patients under various clinical 
conditions. J Clin Microbiol 
2001;39:1972–4. 
2.Allen MI, Deslauriers M, Andrews CW, Tipples GA, Walters KA, Tyrrell 
DL, et al. Identification and characterization of mutations in hepatitis B 
virus resistant to lamivudine. Lamivudine Clinical Investigation Group. Hepatology 
1998;27:1670–7. 
3.Allen MI, Gauthier J, DesLauriers M, Bourne EJ, Carrick KM, Baldanti F, et al. Two 
sensitive PCR-based methods for detection of hepatitis B virus variants associated with 
reduced susceptibility to lamivudine. J Clin Microbiol 1999;37:3338–47. 
4.Bozdayi AM, Uzunalimoglu O, Turkyilmaz AR, Aslan N, Sezgin O, Sahin T, et al. YSDD: 
a novel mutation in HBV DNA polymerase confers clinical resistance to lamivudine. J 
Viral Hepatitis 2003;10: 
256–65. 
5.Chayama K, Suzuki Y, Kobayashi M, Kobayashi M, Tsubota A, Hashimoto M, et al. 
Emergence and takeover of YMDD motif mutant hepatitis B virus during long-term 
lamivudine therapy and re-takeover by wild type after cessation of therapy. Hepatology 
1998;27:1711–6. 
6.Cheng J, Zhang Y, Li Q. Real-time PCR genotyping using displacing probes. 
Nucleic Acids Res 2004;32:e61. 
7.Geng H, Hua B, Wang H, Cao Y, Sun Y, Yu A. Dual-probe assay for detection of lamivudine-
resistance hepatitis B virus by real-time PCR. J Virol Methods 2006;132:25–31. 
8.Jang H, Cho M, Heo J, Kim H, Jun H, Shin W, et al. Oligonucleotide chip for detection of 
Lamivudine-resistant hepatitis B virus. J Clin Microbiol 
2004;42:4181–8. 
9.Li Q, Luan G, Guo Q, Liang J. A new class of homogeneous nucleic acid probes based on 
specific displacement hybridization. Nucleic Acids Res 
2002;30:e5. 
10.Lok AS, Zoulim F, Locarnini S, Mangia A, Niro G, Decraemer H, et al. 
Monitoring drug resistance in chronic hepatitis B virus (HBV)-infected patients during 
lamivudine therapy: evaluation of performance of INNO- LiPA HBV DR assay. J Clin 
Microbiol 2002;40:3729–34. 
11.Pas SD, de Man RA, Fries E, Osterhaus AD, Niesters HG. The dynamics of mutations in 
the YMDD motif of the hepatitis B virus polymerase gene during and after lamivudine 
treatment as determined by reverse hybridisation. J Clin Virol 2002;25:63–71. 
12.Pillay D, Bartholomeusz A, Cane PA, Mutimer D, Schinazi RF, Locarnini SA. Mutations in 
the hepatitis B virus DNA polymerase associated with antiviral resistance. Int Antiviral News 
1998:167–9. 
13.Punia P, Cane P, Teo CG, Saunders N. Quantitation of hepatitis B lamivudine resistant 
mutants by real-time amplification refractory mutation system PCR. J Hepatol 2004;40:986–
92. 
14.Sasaki T, Tahira T, Suzuki A, Higasa K, Kukita Y, Bba S, et al. Precise estimation of allele 
frequencies of single-nucleotide polymorphisms by a quantitative SSCP analysis of pooled 
DNA. Am J Hum Genet 
2001;68:214–8. 
15.Schuurman R, Demeter L, Reichelderfer P, Tijnagel J, de Groot T, Boucher C. 
Worldwide evaluation of DNA sequencing approaches for identification of drug resistance 
mutations in the human immunodeficiency virus type 
1 reverse transcriptase. J Clin Microbiol 1999;37:2291–6. 
16.Syvanen AC. Accessing genetic variation: genotyping single nucleotide polymorphisms. Nat 
Rev Genet 2001;2:930–42. 
17.Tsuchihashi Z, Dracopoly NC. Progress in high throughput SNP genotyping methods. 
Pharmacogenomics J 2002;2:103–10. 
18.Wightman F, Walters T, Ayres A, Bowden S, Bartholomeusz A, Lau D, et al. 
Comparison of sequence analysis and a novel discrim- inatory real-time PCR assay for 
detection and quantification of Lamivudine-resistant hepatitis B virus strains. J Clin 
Microbiol 2004;42: 3809–12. 
19.Whalley SA, Brown D, Teo CG, Dusheiko GM, Saunders NA. Moni- toring the emergence of 
hepatitis B virus polymerase gene variants during lamivudine therapy using the 
LightCycler. J Clin Microbiol 
2001;39:1456–9. 
20.Wolford JK, Blunt D, Ballecer C, Prochazka M. High-throughput SNP detec- tion by using 
DNA pooling and denaturing high performance liquid chromatography (DHPLC). Hum 
Genet 2000;107:483–7.